光遗传学：一项注定要得诺贝尔奖的技术-凯发k8一触即发

用于光与大脑研究的小鼠。图片来源：斯坦福光遗传学研究中心

撰文 | 陆绮（美国韦恩州立大学医学院博士后）

责编 | 叶水送、徐可

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人们常把人脑与电脑相比，因为两者都是由大量的基本元件构成：大脑里有数百亿个神经细胞，计算机里面有数亿个晶体管。大脑和计算机中，基本元件之间都互相连线构成巨大的网络，在网络中，它们利用电信号快速传递着海量信息。神经科学家怎样通过测量大脑中的信息流，来了解大脑的功能呢？传统的方法是用电极测量神经细胞上的电信号，这就像电话窃听器一样，以此来了解它们是怎样工作的，这个方法也叫“电生理”。虽然该方法已在历史上延用百年，但缺点也很明显：在一个含有数亿个神经细胞互动的过程中，只测量其中几个神经细胞活动，就好像试图通过电视屏幕上几个像素的闪烁来猜测一个电视剧的内容。

早在1960年代，耶鲁大学年轻的劳伦斯·科恩教授（lawrence b. cohen)就想办法引进一个光的元素，把神经电信号变成光，让神经科学家看到大脑活动的“电视剧”。他的想法是利用一种化学染料把神经细胞染色，染料的分子并不进入神经细胞，而只附着在细胞膜上。这样当神经细胞产生电信号时，染料的分子结构受到电场影响而改变颜色。这样就可以通过测量染料的荧光来对神经组织进行成像。这种“电压敏感染料成像”方法转眼做得风声水起，在顶级杂志上，文章一篇接一篇地发表。他的学生找工作时，只要放一小段震撼人心的“脑电影”，就能轻易俘获满堂听众的芳心，顺利地得到工作。但这种方法也有个明显的缺点，就是对神经细胞没有选择性，不同神经细胞对光信号贡献没法分开。

我们知道大脑中有兴奋和抑制两种神经细胞，就像汽车的油门和刹车，兴奋的负责“嗨”，抑制的负责瞌睡。如果有一种方法能分清楚这两种不同细胞的信号，那研究工作就更上了一层楼。可是化学染料对神经细胞的选择性很差，远远做不到分辨来自不同细胞的信号。这个问题为难了整整一代神经科学家。

科恩小组的工作主要是利用大学长长的暑假，把实验室搬到在麻省海边，位于鳕鱼角的伍兹霍尔海洋生物站（woods hole marine biological station)。那几十年是美国科研的黄金时代，在伍兹霍尔聚集了一大批心怀各种梦想的神经科学家。他们白天躲在各自的实验室里工作，晚上则聚在海滩或镇上的小酒吧里高谈阔论。谁有个新发现，身边马上聚满粉丝，新闻转瞬传遍世界，根本等不到文章发表。科恩的学生乘着电压敏感染料的东风发明了另一种染料，它可以进入细胞并随着细胞内钙离子浓度的变化发光。钙离子在一切细胞中都有非常重要的作用，能做“钙成像”的消息一下子引爆伍兹霍尔，他火得连在上厕所的时候，站在旁边尿尿的人都会突然提个问题。

在这群伍兹霍尔科学家中，有个谦和的日本科学家下村修（osamu shimomura），成天拿着捞网在海边收集水母。伍兹霍尔海水温暖，夏天傍晚阵阵清风掀起涟绮，海面成千上万的水母会竞相发出绿色荧光，美如梦幻。下村多年来一直着迷于这种发光的现象，并于1960 年代在普林斯顿大学纯化了这种绿色荧光蛋白。年复一年，伍兹霍尔夏末的学术讨论会上，他在做报告时让把灯全关掉，黑暗中他从口袋里拿出两只试管，当溶液混合时会产生幽幽的鬼火似的蓝光。报告厅里科恩照例坐在角落里，瞪着一双牛眼不知道在想什么。下村的荧光蛋白与科恩的光学成像多次在报告厅里相遇，但从来没擦出火花。因为分子遗传学的大潮还没有涌现，光学遗传学的弄潮儿还站在海滩上呢。

1990 年代，下村的水母荧光蛋白迅速成为光遗传学领域中的第一个明星。首先，它的基因被克隆，并可以在其他物种中表达。由此只要把它的基因转移到某些细胞中，这些细胞就可以在组织中发亮，给科学家指引目标。1995年，加州大学圣地亚哥分校的钱永健发现改变蛋白分子上一个氨基酸可以使其发光加强而且更加稳定。那几年产生了“荧光蛋白热”，几个研究小组使用各种方法改变绿色荧光蛋白，不但使其更亮更稳定，而且也产生出红、蓝、黄、青等不同颜色的蛋白。这项工作终于在2008年让钱永健、下村修和马丁·查尔菲（martin chalfie）一起获得了诺贝尔化学奖。

如果用转基因的方法让脑细胞随机地表达几种不同颜色的荧光蛋白，在紫外光下每个脑细胞就会出五彩斑斓的荧光，我们可以把每个细胞看得清清楚楚（图1），这项技术也叫“脑彩虹”（ brainbow）[1] 。 有了可以通过遗传学手段标记细胞的荧光蛋白，光学遗传学下一步的目标就是怎样利用荧光蛋白显示神经细胞的活动，以及怎样利用光来指挥和控制神经细胞的活动。 

图1. brainbow（脑彩虹）项目获得的荧光标记海马皮层细胞图和荧光标记视网膜方向选择性神经元图。左图展示的是，使用脑彩虹技术将不同的海马皮层细胞用不同颜色区分开来，图中彩色大斑块就是细胞的胞体，纤细的须状物是神经树突。左图作者： tamily weissman, harvard university；右图是视网膜中参与方向信息识别的神经节细胞，树丛一样的是神经节细胞的树突，一根根长长的线是轴突，轴突都汇集到眼球的视盘（右图下部），然后到达大脑的视觉中枢。右图作者：josh r. sanes, harvard university。

神经细胞的活动有两个重要的指标：第一个是细胞膜电位的变化，第二个是细胞内钙离子浓度变化，下面分别描述测量这两个指标的方法。神经细胞的膜电位变化是神经细胞活动最基本的信号，当膜电位变化时，细胞膜上镶嵌的许多蛋白质分子都会改变形状，因此改变膜电位是一个细胞指挥自己身上亿万个蛋白分子统一行动的信号，这类随膜电位改变形状的蛋白分子也叫电压敏感蛋白。如果用基因工程的办法，把电压敏感蛋白和荧光蛋白连接起来，当膜电位改变时，电压敏感蛋白的改变就会影响荧光蛋白的结构，从而改变了后者的发光特性。这样就可以利用荧光来看神经细胞膜的膜电位变化了。

图2. 膜电位变化指示蛋白（a）asap1[2]的设计基于环段置换绿色荧光蛋白（circularly permuted green fluorescent protein，cpgfp）。当膜内电位由负变正去极化时，插入膜中的结构域被推斥向膜外，cpgfp结构变化，被蓝光激发的绿色荧光量下降；（b）一部分神经元表达电位指示蛋白，当细胞兴奋时，荧光强度下降；（c）小鼠大脑皮层示意图（d）暴露的大脑表面照片（e）电位变化成像图，在刺激后每隔20毫秒拍一张荧光图片；（c, d, e图来源于akemann w 的综述[3]）

图2a举例说明这种思路。图2a左面的绿色桶形是绿色荧光蛋白分子，灰色的长方块是电压敏感蛋白，它的分子在细胞膜（黄色）的内外穿插四次。当神经细胞不活动时，细胞膜处于内负外正的状态，这时电压敏感蛋白整齐排列，荧光蛋白分子受到蓝光（蓝箭头）的照射时，会发出绿色的荧光（绿箭头），而当神经细胞兴奋时膜电位会改变，成为内正外负（图2a右），这时电压敏感蛋白分子形状就会发生改变，牵扯到的荧光蛋白也改变形状，造成绿色荧光大大下降。如图2b所示，当用转基因的办法让神经细胞携带这种荧光蛋白－电压敏感蛋白复合体时，在大脑皮层不活动时可以看到较强的荧光（图2b左），当大脑皮层活动时荧光就会减弱（图2b右）。图2c-e显示这种光遗传学方法测量神经电活动的一个应用实例。小鼠的胡须是其非常重要的感受器，当一根胡须被拨动时，大脑皮层感觉区（s1) 会有很强烈的神经活动。为了显示对小鼠大脑皮层的荧光成像（图2c中的蓝方框，放大到图2d中），当一根胡须受到拨动时，我们就会看到皮层不同区域荧光依次减弱，这表示神经活动在皮层上扩布（图2e）。

钙离子参与了细胞内很多生理过程，如细胞内信息传递、基因表达、神经递质释放等等。细胞内的钙离子浓度非常低，胞外钙浓度是胞内的十万倍以上。虽然有巨大的浓度梯度，但是钙离子不能透过细胞膜，必须通过特殊的钙离子通道(图3a中绿色的蛋白分子)才能进入细胞。神经细胞在静息的时候钙离子通道都是关闭的，当膜电位变化时，对电压敏感的钙离子通道会大批开放，胞外的钙离子会迅速涌进胞内，造成一个突然的钙高峰。那么如何来观察细胞内钙浓度的突然增加呢？生物基因工程学家的思路与前述的电压敏感荧光蛋白类似，将能与钙离子结合的蛋白组合钙调蛋白（cam）和它的亚基m13分别连在绿色荧光蛋白的两个位置上。当这个融合蛋白不结合钙离子的时候，绿色荧光蛋白不会发出荧光，当cam和m13结合了钙离子，这两个蛋白就会更加紧密的靠在一起，与绿色荧光蛋白的结构完整地结合起来，就发出了明亮的荧光 (图3b)。基因工程重组钙敏感荧光蛋白就是通过这个方法来构建的。

图3c-d显示这种光遗传学方法测量神经细胞内钙浓度变化的一个应用实例。表达有钙敏感荧光蛋白的神经细胞在不兴奋时，有比较弱的荧光，而当该神经细胞兴奋时，细胞外的钙离子进入细胞内，细胞内的钙敏感荧光蛋白结合了流入的钙离子之后，荧光强度变亮，细胞发光，观察者就知道这个细胞参与了此时此刻的神经信息处理过程。

图3. 钙浓度变化指示蛋白示意图。（a）钙离子参与细胞活动的方方面面。钙离子是细胞信号传导中的重要信使，因为一旦它们进入细胞质，钙离子会结合并激活很多酶和蛋白质。由下图所示的细胞为例，钙离子通过ampa（α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异恶唑丙酸受体）受体、nmda（n-甲基-d-天冬氨酸）受体等离子通道进入细胞，可引发一系列突触后膜的活动，由此可能引发突触结构性的变化，比如更多的ampa受体插入膜上。在细胞胞体内流的钙离子，或者细胞内钙库释放的钙离子结合钙调蛋白，可影响基因表达。在神经细胞轴突末梢流入的钙离子，是神经递质释放的前提条件；（b）基因工程重组钙敏感荧光蛋白（genetically encoded calcium indicator由ro bert e. campbel设计；(c) 细胞兴奋前后荧光量的变化；（d）荧光强度随着细胞内钙的浓度变化而波动[4]。

在经典的神经生物学实验中，激活一个神经细胞大致有两种方法：物理的和化学的。物理的方法就是电刺激，例如将金属电极放在神经细胞旁边，改变细胞外电场，从而激活细胞；化学的方法，就是施加神经递质类的小分子，或者作用于细胞受体的药物。而光遗传学提供了一个全新的方法，就是直接用光来准时刻、准位点地刺激细胞。光遗传学是怎么做到的呢？

大家知道人类的眼睛就是一个光信号-生物电的光电转换系统，那么是否可以用眼睛的方法来进行光电转换呢？让我们首先用一张图来大致了解人类眼睛的光信号转换为细胞电信号的过程（图4）。感兴趣的朋友可以仔细阅读图4的图解，但是我们其实只需要瞄一下这张图有个直观感受，在感光细胞中，要将光信号转换为使细胞电生理兴奋状态的改变，需要十几个蛋白协同工作；但是光遗传学中，只需要一个光敏蛋白（例如光敏通道channel rhodopsin，chr2），就可以使细胞兴奋，这在科研应用中非常重要，因为在一个细胞中多表达几个蛋白，比只表达一个蛋白的难度系数可是成几何级数增长的。而细胞本身也无法承载那么多外源蛋白的额外负担，而且这么多外源蛋白的表达程度还必须保持相互平衡状态，这简直是不可能的任务。甚至可以说，光敏通道这一种蛋白作为感光受体（photoreceptor），几乎可以代替整个感光细胞这一精密复杂的光电转换生物系统。

图4. 感光细胞光电信号转换过程简化说明以及光敏通道示意图：（a）光强不变的时候，感光细胞中的有高浓度的环鸟苷酸（cgmp），cgmp门控阳离子通道（cgmp-gated channel）开放，细胞一直处于去极化，释放递质谷氨酸（glutamate，glu）的状态。在光强增加的时候，光子被视紫红质（rhodopsin，rh）吸收。视紫红质由吸收光子的小分子视黄醛（11-cis-retinal）和视蛋白（opsin）组成。视紫红质其实是一个g蛋白偶联受体，它激活了g蛋白（transducin）。g蛋白释放gdp，结合gtp。g蛋白的α亚基与βγ二聚体分离，α亚基结合并激活磷酸二酯酶（phosphodiesterase，pde），pde水解cgmp成gmp，cgmp浓度下降，cgmp门控阳离子通道关闭，细胞膜电位下降超极化，电压门控钙通道关闭，递质glu释放减少。值得一提的是，感光细胞内还有很多精细调控和反馈机制，还有很多蛋白并未在图中提到，而没有这一大群蛋白，感光细胞的功能是无法正常发挥的；（b）以光敏通道chr2为例，光敏通道只需要一种蛋白即可，当与chr2共价结合的all-trans-retinal吸收了光子，促使chr2分子构象发生变化，蛋白中间出现阳离子通道，na离子和ca离子的内流就可使细胞内电位上升，细胞去极化兴奋，如果表达chr2的是神经细胞，膜电位去极化可激活在轴突末端的电压门控钙通道，轴突末端的钙内流可促使神经细胞释放神经递质囊泡。

图5 光敏蛋白工具箱。（a）光敏阳离子通道（b）光敏阴离子通道（c）光敏氯离子泵 （d）光敏氢离子泵（e）光敏代谢型受体（f）光敏腺苷酸环化酶。

图5中举了几个光敏蛋白的例子。如果想要使用光来兴奋细胞，可以使用图5a的光敏阳离子通道，施加蓝光可以使阳离子通过该通道进入细胞，使细胞内膜电位成为内正外负，细胞就可以兴奋。如果想要使用光来抑制细胞活动，可以使用图5b的光敏阳离子通道、图5c的光敏氯离子泵和图5d的光敏氢离子泵。图5b中施加蓝光可以使阴离子通过该通道进入细胞，使细胞内膜电位成为内负外正，细胞就可以被抑制。图5c和5d中施加黄光可以使阴离子通过该离子泵进入细胞或者阳离子离开细胞，使细胞内膜电位成为内负外正，细胞就可以被抑制。图5e的光敏代谢型受体，不是通过直接的把阴阳离子跨膜运动来改变细胞的活动，而是较为间接地通过光控制细胞内的化学作用来达到影响细胞的目的。

2002年，杰罗·麦森伯克（gero miesenböck）实验室[5]首先尝试了这个大胆的设计，他把来自于非脊椎动物的感光蛋白（metarhodopsin）表达在体外培养大鼠皮层神经元上，观察到了变视紫质（metarhodopsin）可使神经元兴奋。这是实现光控细胞活动最早的一个成功的实验。2005年，杰罗·麦森伯克进一步把变视紫质表达在果蝇肌肉细胞上[6]。再把果蝇砍去头，这样果蝇扇翅膀的运动就不能被自身的运动神经所控制。然后，再把光打在果蝇身体上，没头的果蝇竟然拍翅膀了！ 

因此，2003年左右，当皮特·黑格曼（peter hegemann）实验室连续发表了两篇微生物中的单个光敏离子通道（channelrhodopsin）chr1[7]和chr2[8]时，许多神经生物学家精神为之一振，世界各地同时有四个实验室尝试表达于哺乳动物细胞，可谓英雄所见略同。他们分别为美国斯坦福大学的卡尔·德塞罗斯（karl deisseroth）实验室[9]，美国凯斯西储大学（case western reserve university）的林恩·兰德梅塞（lynn t. landmesser）和斯蒂芬·赫利茨（stefan herlitze）实验室[10]，日本的hiromu yawo实验室[11]以及美国韦恩州立大学（wayne state university）的潘卓华实验室[12]。德塞罗斯实验室的文章是最先发表于2005年8月nature neuroscience，但只做了体外培养的细胞表达，值得一提的是发展了crsipr/cas9工具的张锋也参与了这项工作，他是第二作者。仅仅迟了两个月的兰德梅塞和赫利茨实验室就做得全面很多，有体外培养海马皮层神经元表达，以及在体脊髓神经元表达。日本的hiromu yawo实验室比德塞罗斯迟了3个月，但是也做了体外培养细胞系pc12的表达和改变细胞兴奋性的实验。但是最晚于2006年4月发表的潘卓华老师实验室的工作做得最全面，从体外细胞表达到小鼠在体神经细胞表达和电生理记录一应俱全。实际上据潘卓华老师介绍，2004年底，他的在小鼠视网膜体内表达的实验就已经完成，而且依次投递了nature和science，但是都未被接受，甚为遗憾，这部分历史在黑格曼的综述中有客观叙述[13]。

2006年后，光遗传学的时代来临了，光遗传学给物理光学、光化学和生物学提供了新的结合点。结合了基因工程技术和最前沿的光学技术，这个方法有很多优点，例如在体表达的实际操作性高、准确时效性、创伤少、无异物侵入组织等等，可以用定位的光纤来局部刺激细胞，也可以设计弥散光大范围地刺激脑区。许多实验室开始广泛参与光遗传学的研究工作，有些实验室使用光敏通道来代替经典电极刺激，有些实验室寻找更多的光敏蛋白来丰富这一工具箱，有些实验室希望利用光敏蛋白来提供临床治疗应用。

经典的基因工程研究思路中，曾经是把来源于不同物种的蛋白在动物模型上表达，或者将原始蛋白和荧光蛋白形成融合蛋白等等。但是光敏通道的发现似乎一下子开拓了科研人员的想象。从光敏蛋白chr2的结构来看，完全不像是个经典的通道结构，而像一个代谢型g蛋白偶联受体，chr2是一个7次α螺旋跨膜结构，但是竟然在7个螺旋中有离子的通道，因此研究者脑洞大开，认为理论上可以通过基因工程的改造，有可能将所有原本不受光子激活的蛋白都改造为对光敏感。就像在2002年发现的如图5f的光敏腺苷酸环化酶（adenyl cyclases）一样[14]。使用这个思路，2006年埃胡德·伊萨科夫（ehud y isacoff）和德克·特劳纳（dirk trauner）实验室合作，成功构建了光敏谷氨酸离子通道（liglur）[15]。钱德拉·塔克（chandra l tucker）实验室[16]和温德尔·利姆（wendell a. lim）实验室[17]在2009年左右分别独立的设计了光控制的蛋白相互作用和光控制基因转录方法。

在特定细胞环路上表达光敏通道，再使用可拍摄深层组织的双光子显微镜系统，使活体观察动物神经系统活动成为可能，这也是最近十来年最大的科学突破之一。神经科学家对神经系统的认知早已从递质、激素和受体决定一切，转变为认为大脑是一个高效细胞环路。生物工程最前沿的目标应当是结合光遗传学、光学成像和组织细胞工程来人工构建的细胞环路。

临床医疗研究者也在近十年尝试利用非侵入性的光遗传学手段来治疗各种疾病，例如嗜睡症[18]、抑郁症[19]、恐惧[20]、焦虑[21]、疼痛[22]、帕金森综合症和失明等。这些尝试给“光疗法”赋予了全新的意义。但是将感光蛋白引入人体还需要非常谨慎，毕竟我们对人体还不能说是完全地了解和掌握，特别是很多精神疾病涉及的脑区很广泛，使用光遗传学治疗很难刺激如此大的范围。因此，只有帕金森症以及失明的治疗在现阶段看来比较可行，因为所涉及的组织区域已明确而且是一个限定的区域。2015年，美国食品与药品监督管理局（fda）已经批准了光遗传学治疗失明的临床试验。

光遗传学开拓的全新领域也激发了科学家更多的想法，比如为什么光控受体一定要是蛋白质呢？是否可以有dna、rna的光感受器，来加入光遗传学的工具箱？例如理查德·克雷默（richard h. kramer）实验室设计了aaq[23]和denaq[24]感光小分子，并将其用于尝试治疗失明。比如声遗传学，就是利用声波或者超声波来影响细胞；比如磁遗传学，就是利用外加磁场来无创控制细胞。未来是不是还有机械遗传学，用纳米颗粒甚至智能小机器人来提供局部机械刺激给细胞呢？在这个时代：anything is possible！

参考文献：

[1]livet j, weissman ta, kang h, et al. transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system. nature, 2007, 450(7166): 56-62

[2]st-pierre f, marshall jd, yang y, et al. high-fidelity optical reporting of neuronal electrical activity with an ultrafast fluorescent voltage sensor. nat neurosci, 2014, 17(6): 884-9

[3]akemann w, song c, mutoh h, et al. route to genetically targeted optical electrophysiology: development and applications of voltage-sensitive fluorescent proteins. neurophotonics, 2015, 2(2): 

[4]berlin s, carroll ec, newman zl, et al. photoactivatable genetically encoded calcium indicators for targeted neuronal imaging. nat methods, 2015, 12(9): 852-8

[5]zemelman bv, lee ga, ng m, et al. selective photostimulation of genetically charged neurons. neuron, 2002, 33(1): 15-22

[6]miesenbock g and kevrekidis ig. optical imaging and control of genetically designated neurons in functioning circuits. annu rev neurosci, 2005, 28: 533-63

[7]nagel g, ollig d, fuhrmann m, et al. channelrhodopsin-1: a light-gated proton channel in green algae. science, 2002, 296(5577): 2395-8

[8]nagel g, szellas t, huhn w, et al. channelrhodopsin-2, a directly light-gated cation-selective membrane channel. proc natl acad sci u s a, 2003, 100(24): 13940-5

[9]boyden es, zhang f, bamberg e, et al. millisecond-timescale, genetically targeted optical control of neural activity. nat neurosci, 2005, 8(9): 1263-8

[10]li x, gutierrez dv, hanson mg, et al. fast noninvasive activation and inhibition of neural and network activity by vertebrate rhodopsin and green algae channelrhodopsin. proc natl acad sci u s a, 2005, 102(49): 17816-21

[11]ishizuka t, kakuda m, araki r, et al. kinetic evaluation of photosensitivity in genetically engineered neurons expressing green algae light-gated channels. neurosci res, 2006, 54(2): 85-94

[12]bi a, cui j, ma yp, et al. ectopic expression of a microbial-type rhodopsin restores visual responses in mice with photoreceptor degeneration. neuron, 2006, 50(1): 23-33

[13]hegemann p. algal sensory photoreceptors. annu rev plant biol, 2008, 59: 167-89

[14]iseki m, matsunaga s, murakami a, et al. a blue-light-activated adenylyl cyclase mediates photoavoidance in euglena gracilis. nature, 2002, 415(6875): 1047-51

[15]volgraf m, gorostiza p, numano r, et al. allosteric control of an ionotropic glutamate receptor with an optical switch. nat chem biol, 2006, 2(1): 47-52

[16]kennedy mj, hughes rm, peteya la, et al. rapid blue-light-mediated induction of protein interactions in living cells. nat methods, 2010, 7(12): 973-5

[17]levskaya a, weiner od, lim wa, et al. spatiotemporal control of cell signalling using a light-switchable protein interaction. nature, 2009, 461(7266): 997-1001

[18]adamantidis ar, zhang f, aravanis am, et al. neural substrates of awakening probed with optogenetic control of hypocretin neurons. nature, 2007, 450(7168): 420-4

[19]chaudhury d, walsh jj, friedman ak, et al. rapid regulation of depression-related behaviours by control of midbrain dopamine neurons. nature, 2013, 493(7433): 532-6

[20]liu x, ramirez s, pang pt, et al. optogenetic stimulation of a hippocampal engram activates fear memory recall. nature, 2012, 484(7394): 381-5

[21]tye km, prakash r, kim sy, et al. amygdala circuitry mediating reversible and bidirectional control of anxiety. nature, 2011, 471(7338): 358-62

[22]gu l, uhelski ml, anand s, et al. pain inhibition by optogenetic activation of specific anterior cingulate cortical neurons. plos one, 2015, 10(2): e0117746

[23]polosukhina a, litt j, tochitsky i, et al. photochemical restoration of visual responses in blind mice. neuron, 2012, 75(2): 271-82

[24]tochitsky i, polosukhina a, degtyar ve, et al. restoring visual function to blind mice with a photoswitch that exploits electrophysiological remodeling of retinal ganglion cells. neuron, 2014, 81(4): 800-13